MEDIA SECARA GARIS BESAR

MEDIA SECARA GARIS BESAR

Media adalah kumpulan zat ortganik ataupun anorgaik yang digunakan untuk menumbuhkan bakteri dengan syarat-syarat tertentu. Adapun syarat tersebut adalah sebagai berikut :

• Susunan makan
  
• Tekanan osmosis
  
• Derajat keasaman
  
• Temperatur
  
• Sterilisasi
  

Di laboratorium mikrobiologi dikenal berbagai macam perbenihan sesuai dengan kebutuhan bakteri. Medium tersebut terutama tersusun dari bahan-bahan penyusun tubuhnya sendirimisalnya air, pepton, protein, kabrohidrat, garam, mineral dan lain sebagainya.

Secara singkat dapat dikatakan bahwa kegunaan medium (perbenihan) dalam laboratorium adalah sebagai berikut :

• Untuk pembiakan dengan tujuan memperbanyak bakteri yang dicari
  
• Isolasi bakteri agar didapat bakteri yang murni
  
• Menyimpan bakteri yang telah murni dalam waktu yang lama untuk keperluan sehari-hari
  
• Mengetahui sifat-sifat pertumbuhan bakteri
  

 

PENGGOLONGAN MEDIA

1. Secara garis besar dikenal ada dua jenis media, yaitu :
   

• Media hidup
  

  Media hidup digunakan untuk menanam/isolasi virus. Disamping itu, sering pula media hidup digunakan untuk mengetahui sifat-sifat tertentu dari bakteri, misalnya untuk mengetahuijenis bakteri E. colli yang patogen yang menggunakan tikus putih yang berumur 3-7 tahun. Kebanyakn virus hanya dapat ditanam pada bagian tertentudari binatang, misalnya ginjal kera, embrio ayam dan lain-lain.
  

• Media buatan
  

  Media buatan adalah media yang dibuat dari kumpulan zat tertentu baik yang bersifat anorganik maupun organiksesuai dengan kebutuhan bakteri yang dibiakan itu sendiri.
  

1. Menurut konsistensinya dikenal terdapat tiga jenis, yaitu :
   

• Media padat (solid)
  
• Media setengah padat (semi solid)
  
• Media cair
  

1. Menurut isi dari media, yaitu :
   

• Media basal
  

  Digunakan untuk membuat media yang lebih kompleks. Media basal dibagi menjadi dua, yaitu basal padat dan basal cair.
  

• Media campuran
  

  Dalam pembuatan media, selain media basal, juga sering dicampurkan dengan media campuran sesuai dengan kebutuhan bakterinya.
  

1. Menurut tingkatannya dibagi menjadi dua, yaitu :
   

• Media sederhana
  

  Didalamnya hanya terkandung zat kimia yang sederhana saja, misalnya gula-gula, alkali pepton.
  

• Media kaya
  

  Didalamnya mengandung zat kimia organik tingkat tinggi, seperti serum, darah dan telur
  

1. Menurut penggunaannya dibedakan menjadi beberapa bagian, yaitu :
   

• Media kaya
  

  Digunakan untuk mendapatkan media yang tidak dapat tumbuh dengan media sederhana saja, misalnya Gonococcus, Streptococcus, Pnemococcus dan lain-lain.
  

  untuk mikroba diatas membutuhkan penambahan zat yang berasal dari makhluk hidup, misalnya darah dan telur.
  

• Media selektif
  

  Media ini memiliki susunan sedemikian rupa, sehingga mikroba yang dicari akan tumbuh dengan koloni yang khas sedangjan mikroba yang lain kurang khas.
  

• Media ekslusif
  

  Media ini dibuat sedemikian rupa agar mikroba tertentu dapat hidup, misalnya dengan membuat pH menjadi sangat alkali atau menmbahkan antibiotik kedalamnya.
  

• Media pembiakan
  

  Digunakan bilamana dalam suatu material adanya kuman yang dicari dalam jumlah sangat sedikit atau disamping jumlah kuman yang dicari sangat sedikit juga terdapat kuman lain dalam jumlah besar.
  

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

DAFTAR PUSTAKA

Kurniati, iis. 2009. Penuntun & Jurnal Praktikum Media dan Reagensia. Sekolah Tinggi     Analis Bakti Asih: Bandung.

MEDIA MIKROLOGI

Media dan Reagensia

Gimana sieh buat bikin media mikrobiologi ama reagensia ??

Kata buku yang saya baca, pembuatan media dengan pembuatan reagensia itu hanya berbeda pada saat prosesnya saja. Proses apa ?? Yaitu proses sterilisasi nya... pasti bagi yang belum mengetahui apa itu sterilisasi, bertanya-tanya... Sterilisasi itu proses dimana terjadinya pensucihamaan suatu alat atau media mikrobiologi dari bakteri bakteri baik yang bersifat patogen maupun bukan patogen. Nah, sekarang balik lagi ke tahapan-tahapan pembuatan media mikrobiologi.

Tahap pertama adalah sterilkan semua alat-alat yang akan di gunakan, misalnya erlenmeyer glass, cawan petri, beker glass, piper seukuran, pipet ukur atau segala alat gelas yang akan diperlukan. Tahap kedua adalah timbang media yang akan dipakai, misalnya media agar nutrien, TSB, TSA, atau MC sebanyak yang di butuhkan. Tahap ketiga yaitu penghomogenan larutan. Maksudnya adalah pelarutan media tersebut di atas dengan zat pelarut, misalnya dengan aquades atau zat pelarut lainnya. Tahap keempat, pindahkan media yang telah larut tersebut ke dalam tempat yang sesuai dengan kegunaannya. Tahap kelima, bungkus tempat-tempat media dengan kertas koran atau alat pembungkus yang terbuat dari kertas dengan rapi. Tahap keenam, masukan media-media yang sudah terbungkus itu ke alat pensteril, seperti otoklaf dengan suhu 121°C selama 15 menit.

Cara pengerjaan pembuatan reagen dan media tidak jauh berbeda, berikut tahapan-tahapannya.

Langkah awal, adanya pengukuran. Pengukuran di bedakan menjadi dua bagian, yaitu pengukuran dengan alat gelas dan pengukuran dengan alat timbang. Pengukuran alat gelas secara kualitatif dan secara kuantitatif. Secara kualitatif, misalnya dengan gelas ukur dan pipet ukur. Sedangkan secara kuantitatif, misalnya labu ukur dan pipet seukuran. Pengukuran dengan alat timbang pun ada secara kualitatif dan kuantitatif. Secara kualitatif, misalnya dengan timbangan teknis, sedangkan neraca analitis digunakan untuk penimbangan secara kuantitatif. Langkah kedua, dengan penghomogenan atau pelarutan larutan dengan zat pelarut baik yang bersifat polar maupun non-polar. Selanjutnya dengan melakukan pemindahan larutan yang sudah dihomogenkan ke dalam tempat yang sesuai, misalnya larutan AgNO₃ disimpan di botol gelas berwarna gelap, zat-zat yang bersifat basa disimpan di botol yang terbuat dari plastik. Setelah di tempatkan, beri label atau identitas di botol tersebut.

Sekarang, mari kita bahas mengenai reagensia yang lebih spesifik lagi. Awal pembahasan ini, kita akan membahas mengenai fungsi-fungsi dari reagensia. Fungsi reagensia dibagi menjadi dua, yaitu berdasarkan wujud dan berdasarkan kualitasnya.

BERDASARKAN KUALITAS
KUALITATIF	KUANTITATIF
Larutan cair pekat dalam pelarut cair	Larutan Baku Primer
Larutan gas dalam pelarut cair	Larutan Baku Sekunder
larutan gas dalam gas	Larutan Baku Persediaan
larutan persediaan (stock) pereaksi kualitatif

Media dan Reagensia

Gimana sieh buat bikin media mikrobiologi ama reagensia ??

Kata buku yang saya baca, pembuatan media dengan pembuatan reagensia itu hanya berbeda pada saat prosesnya saja. Proses apa ?? Yaitu proses sterilisasi nya... pasti bagi yang belum mengetahui apa itu sterilisasi, bertanya-tanya... Sterilisasi itu proses dimana terjadinya pensucihamaan suatu alat atau media mikrobiologi dari bakteri bakteri baik yang bersifat patogen maupun bukan patogen. Nah, sekarang balik lagi ke tahapan-tahapan pembuatan media mikrobiologi.

Tahap pertama adalah sterilkan semua alat-alat yang akan di gunakan, misalnya erlenmeyer glass, cawan petri, beker glass, piper seukuran, pipet ukur atau segala alat gelas yang akan diperlukan. Tahap kedua adalah timbang media yang akan dipakai, misalnya media agar nutrien, TSB, TSA, atau MC sebanyak yang di butuhkan. Tahap ketiga yaitu penghomogenan larutan. Maksudnya adalah pelarutan media tersebut di atas dengan zat pelarut, misalnya dengan aquades atau zat pelarut lainnya. Tahap keempat, pindahkan media yang telah larut tersebut ke dalam tempat yang sesuai dengan kegunaannya. Tahap kelima, bungkus tempat-tempat media dengan kertas koran atau alat pembungkus yang terbuat dari kertas dengan rapi. Tahap keenam, masukan media-media yang sudah terbungkus itu ke alat pensteril, seperti otoklaf dengan suhu 121°C selama 15 menit.

Cara pengerjaan pembuatan reagen dan media tidak jauh berbeda, berikut tahapan-tahapannya.

Langkah awal, adanya pengukuran. Pengukuran di bedakan menjadi dua bagian, yaitu pengukuran dengan alat gelas dan pengukuran dengan alat timbang. Pengukuran alat gelas secara kualitatif dan secara kuantitatif. Secara kualitatif, misalnya dengan gelas ukur dan pipet ukur. Sedangkan secara kuantitatif, misalnya labu ukur dan pipet seukuran. Pengukuran dengan alat timbang pun ada secara kualitatif dan kuantitatif. Secara kualitatif, misalnya dengan timbangan teknis, sedangkan neraca analitis digunakan untuk penimbangan secara kuantitatif. Langkah kedua, dengan penghomogenan atau pelarutan larutan dengan zat pelarut baik yang bersifat polar maupun non-polar. Selanjutnya dengan melakukan pemindahan larutan yang sudah dihomogenkan ke dalam tempat yang sesuai, misalnya larutan AgNO₃ disimpan di botol gelas berwarna gelap, zat-zat yang bersifat basa disimpan di botol yang terbuat dari plastik. Setelah di tempatkan, beri label atau identitas di botol tersebut.

Sekarang, mari kita bahas mengenai reagensia yang lebih spesifik lagi. Awal pembahasan ini, kita akan membahas mengenai fungsi-fungsi dari reagensia. Fungsi reagensia dibagi menjadi dua, yaitu berdasarkan wujud dan berdasarkan kualitasnya.

 

TUGAS BLOG STABA

STERILISASI

 

Sterilisasi adalah suatu proses untuk membunuh semua jasad renik yang ada, sehingga jika ditumbuhkan di dalam suatu medium tidak ada lagi jasad renik yang dapat berkembang biak. Sterilisasi harus dapat membunuh jasad renik yang paling tahan panas yaitu spora bakteri (Fardiaz, 1992).

Sterilisasai adalah tahap awal yang penting dari proses pengujian mikrobiologi. Sterilisasi adalah suatu proses penghancuran secara lengkap semua mikroba hidup dan spora-sporanya. Ada 5 metode umum sterilisasi yaitu :

• Sterilisasi uap (panas lembap)
  
• Sterilisasi panas kering
  
• Sterilisasi dengan penyaringan
  
• Sterilisasi gas
  
• Sterilisasi dengan radiasi
  

  Metode yang paling umum digunakan untuk sterilisasi alat dan bahan pengujian mikrobiologi adalah metode sterilisasi uap (panas lembap) dan metode sterilisasi panas kering.
  

  Autoklaf adalah alat pemanas tertutup yang digunakan untuk mensterilisasi suatu benda menggunakan uap bersuhu dan bertekanan tinggi (121⁰C, 15 lbs) selama kurang lebih 15 menit. Penurunan tekanan pada autoklaf tidak dimaksudkan untuk membunuh mikroorganisme, melainkan meningkatkan suhu dalam autoklaf. Suhu yang tinggi inilah yang akan membunuh microorganisme. Autoklaf terutama ditujukan untuk membunuh endospora, yaitu sel resisten yang diproduksi oleh bakteri, sel ini tahan terhadap pemanasan, kekeringan, dan antibiotik. Pada spesies yang sama, endospora dapat bertahan pada kondisi lingkungan yang dapat membunuh sel vegetatif bakteri tersebut. Endospora dapat dibunuh pada suhu 100 °C, yang merupakan titik didih air pada tekanan atmosfer normal. Pada suhu 121 °C, endospora dapat dibunuh dalam waktu 4-5 menit, dimana sel vegetatif bakteri dapat dibunuh hanya dalam waktu 6-30 detik pada suhu 65 °C.
  

  Perhitungan waktu sterilisasi autoklaf dimulai ketika suhu di dalam autoklaf mencapai 121 °C. Jika objek yang disterilisasi cukup tebal atau banyak, transfer panas pada bagian dalam autoklaf akan melambat, sehingga terjadi perpanjangan waktu pemanasan total untuk memastikan bahwa semua objek bersuhu 121 °C untuk waktu 10-15 menit. Perpanjangan waktu juga dibutuhkan ketika cairan dalam volume besar akan diautoklaf karena volume yang besar membutuhkan waktu yang lebih lama untuk mencapai suhu sterilisasi. Performa autoklaf diuji dengan indicator biologi, contohnya Bacillus stearothermophilus .
  

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  
   

  Jenis-jenis autoklaf
  

  
   

  Terdapat tiga jenis autoklaf, yaitu gravity displacement, prevacuum atau high vacuum, dan steam-flush pressure-pulse. Perbedaan ketiga jenis autoklaf ini terletak pada bagaimana udara dihilangkan dari dalam autoklaf selama proses sterilisasi.
  

  • Gravity Displacement Autoclave
    

    Udara dalam ruang autoklaf dipindahkan hanya berdasarkan gravitasi. Prinsipnya adalah memanfaatkan keringanan uap dibandingkan dengan udara, sehingga udara terletak di bawah uap. Cara kerjanya dimulai dengan memasukan uap melalui bagian atas autoklaf sehingga udara tertekan ke bawah. Secara perlahan, uap mulai semakin banyak sehingga menekan udara semakin turun dan keluar melalui saluran di bagian bawah autoklaf, selanjutnya suhu meningkat dan terjadi sterilisasi. Autoklaf ini dapat bekerja dengan cakupan suhu antara 121-134 °C dengan waktu 10-30 menit.
    

• Prevacuum atau High Vacuum Autoclave
  

  Autoklaf ini dilengkapi pompa yang mengevakuasi hampir semua udara dari dalam autoklaf. Cara kerjanya dimulai dengan pengeluaran udara. Proses ini berlangsung selama 8-10 menit. Ketika keadaan vakum tercipta, uap dimasukkan ke dalam autoklaf. Akibat kevakuman udara, uap segera berhubungan dengan seluruh permukaan benda, kemudian terjadi peningkatan suhu sehingga proses sterilisasi berlangsung. Autoklaf ini bekerja dengan suhu 132-135 °C dengan waktu 3-4 menit.
  

  Steam-Flush Pressure-Pulse Autoclave Autoklaf ini menggunakan aliran uap dan dorongan tekanan di atas tekanan atmosfer dengan rangkaian berulang. Waktu siklus pada autoklaf ini tergantung pada benda yang disterilisasi.
  

  STERILISASI
  

  I. Tujuan Percobaan
  

  1.Memahami prinsip sterilisasi
  

  2.Memahami dan melakukan metoda-metoda sterilisasi.
  

  3. Mengetahui cara kerja autoklaf
  4. Melakukan proses sterilisasi alat dan bahan yang digunakan pada pengujian mikrobiologi
  5. Membuat media steril untuk pengujian mikrobiologi
  

  II. Teori Dasar
  

  Sterilisasi adalah suatu proses untuk membunuh semua jasad renik yang ada, sehingga jika ditumbuhkan di dalam suatu medium tidak ada lagi jasad renik yang dapat berkembang biak. Sterilisasi harus dapat membunuh jasad renik yang paling tahan panas yaitu spora bakteri (Fardiaz, 1992).
  

  Sterilisasai adalah tahap awal yang penting dari proses pengujian mikrobiologi. Sterilisasi adalah suatu proses penghancuran secara lengkap semua mikroba hidup dan spora-sporanya. Ada 5 metode umum sterilisasi yaitu :
  

  •
  

  Sterilisasi uap (panas lembap)
  

  •
  

  Sterilisasi panas kering
  

  •
  

  Sterilisasi dengan penyaringan
  

  •
  

  Sterilisasi gas
  

  •
  

  Sterilisasi dengan radiasi
  

  Metode yang paling umum digunakan untuk sterilisasi alat dan bahan pengujian
  

  mikrobiologi adalah metode sterilisasi uap (panas lembap) dan metode sterilisasi panas kering.
  

  A. Sterilisasi Uap
  

  Sterilisasi uap dilakukan dengan autoklaf menggunakan uap air dalam tekanan sebagai pensterilnya. Bila ada kelembapan (uap air) bakteri akan terkoagulasi dan dirusak pada temperature yang lebih rendah dibandingkan bila tidak ada kelembapan. Mekanisme penghancuran bakteri oleh uap air panas adalah karena terjadinya denaturasi dan koagulasi beberapa protein esensial dari organism tersebut.:
  

  
  

  Prinsip cara kerja autoklaf
  

  Seperti yang telah dijelaskan sebagian pada bab pengenalan alat, autoklaf adalah alat untuk memsterilkan berbagai macam alat & bahan yang menggunakan tekanan 15 psi (2 atm) dan suhu 1210C. Untuk cara kerja penggunaan autoklaf telah disampaikan di depan. Suhu dan tekanan tinggi yang diberikan kepada alat dan media yang disterilisasi memberikan kekuatan yang lebih besar untuk membunuh sel dibanding dengan udara panas. Biasanya untuk mesterilkan media digunakan suhu 1210C dan tekanan 15 lb/in2 (SI = 103,4 Kpa) selama 15 menit. Alasan digunakan suhu 1210C atau 249,80F adalah karena air mendidih pada suhu tersebut jika digunakan tekanan 15 psi. Untuk tekanan 0 psi pada ketinggian di permukaan laut (sea level) air mendidih pada suhu 1000C, sedangkan untuk autoklaf yang diletakkan di ketinggian sama, menggunakan tekanan 15 psi maka air akan memdididh pada suhu 1210C. Ingat kejadian ini hanya berlaku untuk sea level, jika dilaboratorium terletak pada ketinggian tertentu, maka pengaturan tekanan perlu disetting ulang. Misalnya autoklaf diletakkan pada ketinggian 2700 kaki dpl, maka tekanan dinaikkan menjadi 20 psi supaya tercapai suhu 1210C untuk mendidihkan air. Semua bentuk kehidupan akan mati jika dididihkan pada suhu 1210C dan tekanan 15 psi selama 15 menit.
  

  Pada saat sumber panas dinyalakan, air dalam autoklaf lama kelamaan akan mendidih dan uap air yang terbentuk mendesak udara yang mengisi autoklaf. Setelah semua udara dalam autoklaf diganti dengan uap air, katup uap/udara ditutup sehingga tekanan udara dalam autoklaf naik. Pada saat tercapai tekanan dan suhu yang sesuai, maka proses sterilisasi dimulai dantimer mulai menghitung waktu mundur. Setelah proses sterilisasi selesai, sumber panas dimatikan
  

  dan tekanan dibiarkan turun perlahan hingga mencapai 0 psi. Autoklaf tidak boleh dibuka
  

  sebelum tekanan mencapai 0 psi.
  

  Untuk mendeteksi bahwa autoklaf bekerja dengan sempurna dapat digunakan mikroba
  pengguji yang bersifat termofilik dan memiliki endospora yaitu Bacillus stearothermophillus,
  lazimnya mikroba ini tersedia secara komersial dalam bentuk spore strip. Kertas spore strip ini
  dimasukkan dalam autoklaf dan disterilkan. Setelah proses sterilisai lalu ditumbuhkan pada
  media. Jika media tetap bening maka menunjukkan autoklaf telah bekerja dengan baik.
  (http://www.scribd.com/doc/16574529/petunjuk-praktikum-mikrobiologi-dasar).
  

  B. Sterilisasi Panas Kering
  

  Sterilisasi panas kering biasanya dilakukan dengan menggunakan oven pensteril. Karena panas kering kurang efektif untuk membunuh mikroba dibandingkan dengan uap air panas maka metode ini memerlukan temperature yang lebih tinggi dan waktu yang lebih panjang. Sterilisasi panas kering biasanya ditetapkan pada temperature 160-170oC dengan waktu 1-2 jam.
  

  Sterilisasi panas kering umumnya digunakan untuk senyawa-senyawa yang tidak efektif untuk disterilkan dengan uap air panas, karena sifatnya yang tidak dapat ditembus atau tidak tahan dengan uap air. Senyawa-senyawa tersebut meliputi minyak lemak, gliserin (berbagai jenis minyak), dan serbuk yang tidak stabil dengan uap air. Metode ini juga efektif untuk mensterilkan alat-alat gelas dan bedah.
  

  Karena suhunya sterilisasi yang tinggi sterilisasi panas kering tidak dapat digunakan untuk alat-alat gelas yang membutuhkan keakuratan (contoh:alat ukur) dan penutup karet atau plastik.
  

  C. Sterilisasi dengan penyaringan
  

  Sterilisasi dengan penyaringan dilakukan untuk mensterilisasi cairan yang mudah rusak jika terkena panas atu mudah menguap (volatile). Cairan yang disterilisasi dilewatkan ke suatu saringan (ditekan dengan gaya sentrifugasi atau pompa vakum) yang berpori dengan diameter yang cukup kecil untuk menyaring bakteri. Virus tidak akan tersaring dengan metode ini.
  

  D. Sterilisasi gas
  

  Sterilisasi gas digunakan dalam pemaparan gas atau uap untuk membunuh mikroorganisme dan sporanya. Meskipun gas dengan cepat berpenetrasi ke dalam pori dan serbuk padat. Sterilisasi adalah fenomena permukaan dan mikroorganisme yang terkristal akan dibunuh. Sterilisasi gas biasanya digunakan untuk bahan yang tidak bisa difiltrasi, tidak tahan panas dan tidak tahan radiasi atau cahaya.
  

  E. Sterilisasi dengan radiasi
  

  Radiasi sinar gama atau partikel elektron dapat digunakan untuk mensterilkan jaringan yang telah diawetkan maupun jaringan segar. Untuk jaringan yang dikeringkan secara liofilisasi, sterilisasi radiasi dilakukan pada temperatur kamar (proses dingin) dan tidak mengubah struktur jaringan, tidak meninggalkan residu dan sangat efektif untuk membunuh mikroba dan virus sampai batas tertentu. Sterilisasi jaringan beku dilakukan pada suhu -40 derajat Celsius. Teknologi ini sangat aman untuk diaplikasikan pada jaringan biologi.
  

  III. Alat dan Bahan
  

  Alat :
  

  - Autoclave
  

  - Batang pengaduk
  

  - Oven
  

  - Spatel
  

  - Erlenmeyer
  

  - Gunting
  

  - Tabung reaksi
  

  - Kertas label
  

  - Cawan petri
  

  - Benang kasur
  

  - Botol media
  

  - Alumunium Foil
  

  - Gelas ukur
  

  - Labu takar
  

  - Kapas
  

  - Kasa asbes
  

  - Kaki tiga
  

  Bahan :
  

  - Nutrient Agar
  

  - Nutrient Broth
  

  IV. Prosedur Percobaan
  

  Cara sterilisasi tabung reaksi dan gelas ukur:
  

  
  

  Cara sterilisasi gelas kimia dan labu takar:
  

  Cara sterilisasi cawan petri:
  

  Kapas di bungkus kain kasa dan di ikat dengan benang kasur
  

  bungkusan kapas di masukkan ke mulut tabung reaksi dan labu ukur
  mudian permukaannya di tutup dengan alumunium foil dan di ikat menggunakan benang kasur agar tidak terlepas
  selanjutnya tabung reaksi dan labu ukur di masukkan ke dalam autoclave
  

  permukaan gelas kimia dan labu takar di tutup dengan aluminium foil
  

  selanjutkan gelas kimia dan labu takar di masukkan ke dalam autoclave
  

  seluruh permukaan cawan petri di bungkus menggunakan kertas hvs
  

  
  

  Cara sterilisasi pipet volume:
  

  Pembuatan dan sterilisasi media serta larutan pengencer
  

  Kemudian cawan petri yang telah dibungkus di masukkan ke dalam autoclave
  

  kapas dibungkus kain kasa dan di ikat manggunakan benang kasur
  

  bungkusan kapas di masukkan ke dalam mulut pipet volume
  

  selanjutnya ujung mulut di tutup menggunakan alumunium foil
  

  kemudian pipet volume di bungkus dengan kertas hvs secara menyeluruh
  

  masukkan kedalam autoclave
  

  
  

  Nutrien Agar
  

  Nutrien Brothnutrient agar di timbang untuk pembuatan 400ml
  

  Nutrien agar dimasukkan kedalam labu erlenmeyer dan ditambahkan aquades 400 mL
  

  lalu dipanaskan mengunakan Hot plate stirrer dan diaduk menggunakan magnetik stirrer sampai larutan jernih
  utan dibagi menjadi 2 bagian kedalam labu erlenmeyer dan mulut labu erlenmeyer ditutup dengan gulungan kapas
  kemudian dilapisi dengan alumunium foil
  

  masukkan kedalam autoclave
  

  nutrien broth ditimbang unutk pembuatan 200 mL
  

  nutrien broth dimasukkan kedalam labu erlenmeyer dan ditambahkan aquades 200 mL
  

  lu dipanaskan mengunakan Hot plate stirrer dan diaduk menggunakan magnetik stirrer sampai larutan jernih.
  

  
  

  V. Data Pengamatan dan Perhitungan
  

  Data Pengamatan
  

  No
  

  Media
  

  T=0 jam
  

  T=24 jam
  

  1
  

  Nutrien Agar
  

  •
  

  Nutrien
  

  Agar ditambahkan dengan Aquades
  

  lalu
  

  dipanaskan
  

  dan menghasilkan larutan Nutrien Agar yang berwarna
  

  kuning
  

  muda.
  

  •
  

  Setelah
  

  disterilisasi menggunakan autoklaf larutan tetap berwarna
  

  •
  

  Setelah didiamkan selama 24 jam di laboratorium, larutan
  

  Nutrien
  

  Agar berubah bentuk dari larutan menjadi padatan seperti agar
  

  dan
  

  mengalami
  

  perubahan
  

  warna
  

  dari
  

  kuning
  

  muda
  

  menjadi
  

  kuning keruh.
  

  an dibagi menjadi 2 bagian kedalam labu erlenmeyer dan mulut labu erlenmeyer ditutup dengan gulungan kapas
  

  kemudian dilapisi dengan alumunium foil
  

  masukkan kedalam autoclave
  

  
  

  kuning muda.
  

  2
  

  Nutrien Broth
  

  •
  

  Nutrien
  

  Broth ditambahkan Aquades lalu dipanaskan dan menghasilkan larutan Nutrien Broth yang berwarna
  

  kuning
  

  bening atau jernih.
  

  •
  

  Setelah
  

  disterilisasi menggunakan autoklaf larutan tetap berwarna kuning bening atau jernih.
  

  •
  

  Setelah didiamkan selama 24 jam di laboratorium, larutan Nutrien Broth tidak mengalami
  

  perubahan
  

  bentuk
  

  dan
  

  perubahan warna. Larutan Nutrien Broth
  

  tetap
  

  berwarna
  

  kuning bening atau jernih.
  

  Nutrien Agar setelah di sterilisasi
  

  Gambar ini merupakan madia Nutrien Agar setelah disterilisasi menggunakan autoklaf dan sudah didiamkan selama 24 jam di laboratorium. Nutrien Agar menjadi padatan seperti agar dan berubah warna menjadi kuning agak keruh.
  

  Nutrien broth setelah disterilisasi
  

  
  

  Gambar ini merupakan madia Nutrien Broth setelah disterilisasi menggunakan autoklaf dan sudah didiamkan selama 24 jam di laboratorium. Nutrien Broth tetap berwarna kuning bening atau jernih.
  

  Alat-alat yang disterilisasi adalah labu Erlenmeyer, labu takar, pipet volume, gelas ukur, tabung reaksi dan cawan petri. Semua alat yang sudah disterilisasi tidak mengalami perubahan dan dapat dikatakan semua alat dalam keadaan steril.
  

  Perhitungan
  

  Dit : berat Nutrien Agar yang dibutuhkan untuk pembuatan 200 mL dan berat Nutrien Broth
  

  yang dibutuhkan untuk pembuatan 100 mL.
  Dik : Nutrien Agar : 28 gram untuk 1000 mL, Nutrien Broth : 8 gram untuk 1000 mL
  Jawab :
  Nutrien Agar yang dibutuhkan
  

  = 200 mL/1000 mL x 28 gram
  = 0,2 x 28
  = 5,6 gram
  

  Nutrien Broth yang dibutuhkan
  

  = 100 mL/1000 mL x 8 gram
  = 0,1 x 8
  = 0,8 gram
  

  VI. Pembahasan
  

  Pada percobaan kali ini dilakukan sterilisasai alat-alat yang berada di laboratorium mikrobiologi. Tujuan dilakukannya sterilisasi alat ialah agar alat-alat yang berada di laboratorium tidak terkontaminasi dengan mikroorganisme yang ada di lingkungan sekitar. Alat- alat yang disterilisasi adalah tabung reaksi, labu ukur, labu takar, labu Erlenmeyer, pipet volume, dan cawan petri. Alat-alat disterilisasi menggunakan autoklaf pada suhu 121oC selama 15 menit. Alat-alat yang disterilisasi menggunakan autoklaf merupakan alat-alat gelas yang presisi. Alasan menggunakan autoklaf ialah waktu yang dibutuhkan untuk mensterilkan alat sangkat singkat dan pada suhu 1210C alat gelas tidak akan memuai sehingga tidak akan merubah ukuran alat. Alasan tidak menggunakan oven untuk mensterilkan alat gelas ini karena oven membutuhkan waktu yang lama yaitu 1-2 jam dan membutuhkan suhu yang tinggi 160-170oC. Pada suhu 160-170oC, alat gelas akan memuai sehingga dapat merubah ukuran alat. Sebelum disterilisasi menggunakan autoklaf,semua alat ditutup dengan kapas yang dibungkus kain kasa dan dilapisi alumunium foil. Tujuannya agar semua alat yang disterilisasi benar-benar steril dari mikroba.
  

  Percobaan selanjutnya adalah pembuatan dan sterilisasi media serta larutan pengencer. Media yang digunakan adalah Nutrien Agar dan Nutrien Broth. Pembuatan media Nutrien Broth dilakukan terlebih dahulu karena Nutrien Broth tidak mengandung agar sehingga dapat mudah larut dalam aquades dan waktu yang dibutuhkan untuk melarutkan Nutrien Broth sangat cepat.
  

  Untuk membuat media Nutrien Broth dibutuhkan 0,8 gram Nutrien Broth dan 100 mL aquades. Nutrien Broth lalu dilarutkan dengan aquades dan menghasilkan larutan yang berwarna kuning keruh. Warna kuning keruh ini berarti larutan masih belum steril. Lalu larutan Nutrien Broth dipanaskan menggunakan hot plate stirrer. Pemanasan dilakukan sambil diaduk menggunakan magnetic stirrer yang bertujuan agar Nutrien Broth larut sempurna dan menghasilkan larutan yang jernih. Setelah dilakukan pemanasan, labu Erlenmeyer ditutup dengan kapas yang dibungkus kain kasa dan dilapisi dengan menggunakan alumunium foil.
  

  
  

  Tujuan ditutup kapas dan alumunium foil ialah agar proses sterilisasi media Nutrien Broth berjalan lancar dan menghasilkan media Nutrien Broth yang benar-benar steril. Setelah itu labu Erlenmeyer dimasukkan kedalam autoklaf dengan suhu 1210C selama 15 menit. Setelah 15 menit, labu dikeluarkan dari autoklaf dan menghasilkan larutan Nutrien Broth yang berwarna kuning bening atau jernih sama dengan warna larutan Nutrien Broth sebelum dimasukkan kedalam autoklaf. Setelah itu larutan Nutrien broth didiamkan selama 24 jam di laboratorium. Pendiaman ini dilakukan karena mikroba atau bakteri dapat berkembang biak dengan cepat dalam waktu 24 jam. Setelah 24 jam didiamkan, larutan tetap berwarna kuning bening atau jernih.
  

  Media Nutrien Broth yang sudah disterilisasi dibandingkan dengan Nutrien Broth control.
  

  Ini merupakan gambar Nutrien Broth yang sudah disterilisasi dan Nutrien Broth control. Dari gambar terlihat sekali perbedaan warna antara Nutrien Broth yang sudah disterilisasi dan Nutrien Broth control. Warna larutan Nutrien Broth control adalah kuning keruh. Warna kuning keruh ini disebabkan larutan Nutrien Broth ini tidak disterilisasi dan warna kuning keruh ini menandakan bahwa terdapat banyak bakteri didalam larutan Nutrien Broth control dan dapat dikatan tidak steril. Tetapi warna larutan Nutrien Broth adalah kuning bening atau jernih. Warna kuning bening ini menandakan bahwa larutan Nutrien Broth yang sudah disterilisasi ini tidak terdapat bakteri atau mikroba didalam larutan Nutrien Broth atau dapat dikatakan bahwa larutan Nutrien Broth ini sudah steril.
  

  Untuk membuat media Nutrien Agar dibutuhkan 5,6 gram Nutrien Agar dan 200 mL aquades. Langkah kerja pembuatan media Nutrien Agar ini sama seperti pembuatan media
  

  Nutrien Broth. Proses pemanasan larutan Nutrien Agar dibutuhkan suhu 123-1250C. Hal ini dilakukan agar larutan Nutrien Agar menjadi homogen dan tidak cepat memadat. Setelah dilakukan pemanasan dihasilkan Nutrien Agar yang berwarna kuning muda. Lalu larutan Nutrien Agar ini dimasukkan kedalam autoklaf dengan suhu 1210C selama 15 menit. Setelah 15 menit, larutan Nutrien Agar dikeluarkan dari autoklaf dan menghasilkan larutan Nutrien Agar yang berwarna kuning muda sama seperti warna larutan Nutrien Agar sebelum dimasukkan kedalam autoklaf. Sama seperti larutan Nutrien Broth, larutan Nutrien Agar juga didiamkan selama 24 jam di laboratorium. Setelah didiamkan selama 24 jam, larutan Nutrien Agar berubah bentuk dari larutan menjadi padatan yang menyerupai agar. Selain perubahan bentuk, terjadi juga perubahan warna dari warna kuning muda menjadi warna kuning agak keruh.
  

  A. Sterilisasi Uap
  

  Sterilisasi uap dilakukan dengan autoklaf menggunakan uap air dalam tekanan sebagai pensterilnya. Bila ada kelembapan (uap air) bakteri akan terkoagulasi dan dirusak pada temperature yang lebih rendah dibandingkan bila tidak ada kelembapan. Mekanisme penghancuran bakteri oleh uap air panas adalah karena terjadinya denaturasi dan koagulasi beberapa protein esensial dari organism tersebut:
  

  
  

  
   

  Prinsip cara kerja autoklaf
  

  Seperti yang telah dijelaskan sebagian pada bab pengenalan alat, autoklaf adalah alat untuk memsterilkan berbagai macam alat & bahan yang menggunakan tekanan 15 psi (2 atm) dan suhu 1210C. Untuk cara kerja penggunaan autoklaf telah disampaikan di depan. Suhu dan tekanan tinggi yang diberikan kepada alat dan media yang disterilisasi memberikan kekuatan yang lebih besar untuk membunuh sel dibanding dengan udara panas. Biasanya untuk mesterilkan media digunakan suhu 1210C dan tekanan 15 lb/in2 (SI = 103,4 Kpa) selama 15 menit. Alasan digunakan suhu 1210C atau 249,80F adalah karena air mendidih pada suhu tersebut jika digunakan tekanan 15 psi. Untuk tekanan 0 psi pada ketinggian di permukaan laut (sea level) air mendidih pada suhu 1000C, sedangkan untuk autoklaf yang diletakkan di ketinggian sama, menggunakan tekanan 15 psi maka air akan memdididh pada suhu 1210C. Ingat kejadian ini hanya berlaku untuk sea level, jika dilaboratorium terletak pada ketinggian tertentu, maka pengaturan tekanan perlu disetting ulang. Misalnya autoklaf diletakkan pada ketinggian 2700 kaki dpl, maka tekanan dinaikkan menjadi 20 psi supaya tercapai suhu 1210C untuk mendidihkan air. Semua bentuk kehidupan akan mati jika dididihkan pada suhu 1210C dan tekanan 15 psi selama 15 menit.
  

  Pada saat sumber panas dinyalakan, air dalam autoklaf lama kelamaan akan mendidih dan uap air yang terbentuk mendesak udara yang mengisi autoklaf. Setelah semua udara dalam autoklaf diganti dengan uap air, katup uap/udara ditutup sehingga tekanan udara dalam autoklaf naik. Pada saat tercapai tekanan dan suhu yang sesuai, maka proses sterilisasi dimulai dantimer mulai menghitung waktu mundur. Setelah proses sterilisasi selesai, sumber panas dimatikan dan tekanan dibiarkan turun perlahan hingga mencapai 0 psi. Autoklaf tidak boleh dibuka sebelum tekanan mencapai 0 psi.
  

  Untuk mendeteksi bahwa autoklaf bekerja dengan sempurna dapat digunakan mikroba
  pengguji yang bersifat termofilik dan memiliki endospora yaitu Bacillus stearothermophillus,
  lazimnya mikroba ini tersedia secara komersial dalam bentuk spore strip. Kertas spore strip ini dimasukkan dalam autoklaf dan disterilkan. Setelah proses sterilisai lalu ditumbuhkan pada media. Jika media tetap bening maka menunjukkan autoklaf telah bekerja dengan baik.
  
  

  B. Sterilisasi Panas Kering
  

  Sterilisasi panas kering biasanya dilakukan dengan menggunakan oven pensteril. Karena panas kering kurang efektif untuk membunuh mikroba dibandingkan dengan uap air panas maka metode ini memerlukan temperature yang lebih tinggi dan waktu yang lebih panjang. Sterilisasi panas kering biasanya ditetapkan pada temperature 160-170oC dengan waktu 1-2 jam.
  

  Sterilisasi panas kering umumnya digunakan untuk senyawa-senyawa yang tidak efektif untuk disterilkan dengan uap air panas, karena sifatnya yang tidak dapat ditembus atau tidak tahan dengan uap air. Senyawa-senyawa tersebut meliputi minyak lemak, gliserin (berbagai jenis minyak), dan serbuk yang tidak stabil dengan uap air. Metode ini juga efektif untuk mensterilkan alat-alat gelas dan bedah.
  

  Karena suhunya sterilisasi yang tinggi sterilisasi panas kering tidak dapat digunakan untuk alat-alat gelas yang membutuhkan keakuratan (contoh:alat ukur) dan penutup karet atau plastik.
  

  
   

  
   

  C. Sterilisasi dengan penyaringan
  

  Sterilisasi dengan penyaringan dilakukan untuk mensterilisasi cairan yang mudah rusak jika terkena panas atu mudah menguap (volatile). Cairan yang disterilisasi dilewatkan ke suatu saringan (ditekan dengan gaya sentrifugasi atau pompa vakum) yang berpori dengan diameter yang cukup kecil untuk menyaring bakteri. Virus tidak akan tersaring dengan metode ini.
  

  D. Sterilisasi gas
  

  Sterilisasi gas digunakan dalam pemaparan gas atau uap untuk membunuh mikroorganisme dan sporanya. Meskipun gas dengan cepat berpenetrasi ke dalam pori dan serbuk padat. Sterilisasi adalah fenomena permukaan dan mikroorganisme yang terkristal akan dibunuh. Sterilisasi gas biasanya digunakan untuk bahan yang tidak bisa difiltrasi, tidak tahan panas dan tidak tahan radiasi atau cahaya.
  

  E. Sterilisasi dengan radiasi
  

  Radiasi sinar gama atau partikel elektron dapat digunakan untuk mensterilkan jaringan yang telah diawetkan maupun jaringan segar. Untuk jaringan yang dikeringkan secara liofilisasi, sterilisasi radiasi dilakukan pada temperatur kamar (proses dingin) dan tidak mengubah struktur jaringan, tidak meninggalkan residu dan sangat efektif untuk membunuh mikroba dan virus sampai batas tertentu. Sterilisasi jaringan beku dilakukan pada suhu -40 derajat Celsius. Teknologi ini sangat aman untuk diaplikasikan pada jaringan biologi.
  

  Alat dan Bahan
  

  
   

  Bahan :
  

  - Nutrient Agar
  

  - Nutrient Broth
  

  
   

  Alat :
  

  - Autoclave
  

  - Batang pengaduk
  

  - Oven
  

  - Spatel
  

  - Erlenmeyer
  

  - Gunting
  

  - Tabung reaksi
  

  - Kertas label
  

  - Cawan petri
  

  - Benang kasur
  

  - Botol media
  

  - Alumunium Foil
  

  - Gelas ukur
  

  - Labu takar
  

  - Kapas
  

  - Kasa asbes
  

  - Kaki tiga
  

  
   

  
   

  Prosedur Percobaan
  

  Cara sterilisasi tabung reaksi dan gelas ukur, gelas kimia dan labu takar serta sterilisasi cawan petri:
  

  • Kapas di bungkus kain kasa dan di ikat dengan benang kasur
    
  • Bungkusan kapas di masukkan ke mulut tabung reaksi dan labu ukur
    kemudian permukaannya di tutup dengan alumunium foil dan di ikat menggunakan benang kasur agar tidak terlepas selanjutnya tabung reaksi dan labu ukur di masukkan ke dalam autoclave
    
  • Permukaan gelas kimia dan labu takar di tutup dengan aluminium foil
    
  • Selanjutkan gelas kimia dan labu takar di masukkan ke dalam autoclave
    
  • Seluruh permukaan cawan petri di bungkus menggunakan kertas hvs
    

  Kesimpulan
  

1. Sterilisasi merupakan suatu proses penghancuran secara lengkap semua mikroba hidup dan spora-sporanya
   
2. Terdapat 5 metode umum sterilisasi yaitu sterilisasi uap, sterilisasi panas kering, sterilisasi dengan penyaringan, sterilisasi gas dan sterilisasi dengan radiasi
   
3. Metode sterilisasi uap digunakan untuk sterilisasi sediaan farmasi dan bahan-bahan lainnya yang tahan terhadap temperature yang digunakan dan tahan terhadap penembusan uap air
   
4. Larutan Nutrien Agar setelah disterilisasi memadat seperti agar dan berwarna kuning
   
5. Larutan Nutrien Broth setelah disterilisasi berwarna kuning bening yang menandakan larutan tidak terkontaminasi dan sudah steril
   
6. Prinsip penggunaan autoclave didasarkan pada mikroorganisme, termasuk spora yang tahan panas, mudah terbunuh dengan panas lembab pada tempratur sedikit di atas titik didih air
   

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Daftar pustaka

(http://www.scribd.com/doc/16574529/petunjuk-praktikum-mikrobiologi-dasar).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

MEDIA DAN REAGENSIA

 

Anggota kelompok

Putri Ayu Lestari    (0911C1002)

Arini            (0911C1009)

Rini Indra H        (0911C1010)

 

 

 

 

 

 

 

SEKOLAH TINGGI ANALIS BAKTI ASIH

BANDUNG

2010